Preview

Архивъ внутренней медицины

Расширенный поиск

Неинвазивные предикторы выраженной гистологической активности при хронических заболеваниях печени: роль матриксных металлопротеиназ

https://doi.org/10.20514/2226-6704-2025-15-3-216-225

EDN: QKHGQS

Аннотация

Цель исследования: изучение прогностической значимости клинико-лабораторных маркеров печеночной патологии, в том числе компонентов системы матриксных металлопротеиназ (ММП), для выявления умеренной/выраженной активности при хронических заболеваниях печени (ХЗП). Материалы и методы. Обследовано 76 пациентов ХЗП вирусной или алкогольной этиологии в возрасте от 18 до 64 лет. Минимальная (индекс гистологической активности — ИГА 1-3 балла), слабовыраженная (ИГА 4-8 баллов), умеренная (ИГА 9-12 баллов) и выраженная морфологическая активность (ИГА более 12 баллов) выявлялись в 19 (25,0 %), 34 (44,7 %), 14 (18,4 %) и 9 (11,9 %) случаев соответственно. Методом иммуноферментного анализа определяли содержание в крови ММП-1, ММП-9, тканевого ингибитора матриксных металлопротеиназ-1 (ТИМП-1), рассчитывали соотношение ТИМП-1/ММП-1, ТИМП-1/ММП-9. Результаты. По данным многофакторной логистической регрессии, умеренная/выраженная гистологическая активность ХЗП была ассоциирована с показателями γ-глютамилтранспептидазы (ГГТ) (отношение шансов (ОШ) 1,016; 95 % доверительный интервал (ДИ) (1,006-1,024), р=0,001), международного нормализованного отношения (МНО) (ОШ 1,079; 95 % ДИ (1,028-1,132), р=0,002), соотношения ТИМП-1/ММП-9 (ОШ 0,554; 95 % ДИ (0,380-0,809), р=0,002). Комбинация этих параметров имела чувствительность 82,6 %, специфичность 92,5 % и точность 89,5 % в выявлении ИГА 9 и более баллов. Заключение. Увеличенные значения ГГТ и МНО, а также сниженное соотношение ТИМП-1/ММП-9 являются независимыми факторами риска умеренной/выраженной гистологической активности при ХЗП, что обусловлено их участием в процессах печеночного воспаления.

Об авторах

А. В. Ягода
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Ставропольский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Россия

Ягода Александр Валентинович — д.м.н., профессор, заслуженный деятель науки РФ, заведующий кафедрой госпитальной терапии

Ставрополь 


Конфликт интересов:

Соавтор статьи Ягода А.В. является членом редакционной коллегии журнала «Архивъ внутренней медицины». Статья прошла принятую в журнале процедуру рецензирования. Ягода А.В. не участвовал в принятии решения о публикации этой стать и. Об иных конфликтах интересов авторы не заявляли



П. В. Корой
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Ставропольский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Россия

Корой Павел Владимирович — д.м.н., профессор, профессор кафедры госпитальной терапии

Ставрополь 


Конфликт интересов:

Соавтор статьи Ягода А.В. является членом редакционной коллегии журнала «Архивъ внутренней медицины». Статья прошла принятую в журнале процедуру рецензирования. Ягода А.В. не участвовал в принятии решения о публикации этой стать и. Об иных конфликтах интересов авторы не заявляли



Т. Р. Дудов
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Ставропольский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Россия

Дудов Темирлан Русланович — ассистент кафедры госпитальной терапии

Ставрополь 


Конфликт интересов:

Соавтор статьи Ягода А.В. является членом редакционной коллегии журнала «Архивъ внутренней медицины». Статья прошла принятую в журнале процедуру рецензирования. Ягода А.В. не участвовал в принятии решения о публикации этой стать и. Об иных конфликтах интересов авторы не заявляли



Список литературы

1. Moon A.M., Singal A.G., Tapper E.B. Contemporary epidemiology of chronic liver disease and cirrhosis. Clin. Gastroenterol. Hepatol. 2020; 18: 2650-2666. doi: 10.1016/j.cgh.2019.07.060

2. Devarbhavi H., Asrani S.K., Arab J.P. et al. Global burden of liver disease: 2023 update. J. Hepatol. 2023; 79 (2): 516-537. doi: 10.1016/j.jhep.2023.03.017

3. Jeng W., Papatheodoridis G., Lok A.S. F. Hepatitis B. Lancet. 2023; 401 (10381): 1039-1052. doi: 10.1016/s0140-6736(22)01468-4

4. Stockdale A.J., Kreuels B., Henrion M.Y. R. et al. The global prevalence of hepatitis D virus infection: systematic review and meta-analysis. J. Hepatol. 2020; 73: 523-532. doi: 10.1016/j.jhep.2020.04.008

5. Petagine L., Zariwala M.G., Patel V.B. Alcoholic liver disease: current insights into cellular mechanisms. World J. Biol. Chem. 2021; 12 (5): 87-103. doi: 10.4331/wjbc.v12.i5.87.

6. EASL Clinical Practice Guidelines on non-invasive tests for evaluation of liver disease severity and prognosis — 2021 update. J. Hepatol. 2021; 75 (3): 659-689. doi: 10.1016/j.jhep.2021.05.025

7. Pokorska-Śpiewak M., Kowalik-Mikołajewska B., Aniszewska M. et al. Non-invasive evaluation of the liver disease severity in children with chronic viral hepatitis using FibroTest and ActiTest — comparison with histopathological assessment. Clin. Exp. Hepatol. 2017; 3 (4): 187-193. doi: 10.5114/ceh.2017.7107919

8. Bril F., McPhaul M.J., Caulfield M.P. et al. Performance of the SteatoTest, ActiTest, NashTest and FibroTest in a multiethnic cohort of patients with type 2 dibetes mellitus. J. Investig. Med. 2019; 67: 303-311. doi: 10.1136/jim-2018-000864

9. Geervliet E., Bansal R. Matrix metalloproteinases as potential biomarkers and therapeutic targets in liver diseases. Cells. 2020; 9: 1212. doi: 10.3390/cells9051212

10. Chen J., Xu W., Chen Y. et al. Matrix metalloproteinase 9 facilitates hepatitis B virus replication through binding with type I interferon (IFN) receptor 1 to repress IFN/JAK/STAT signaling. J. Virol. 2017; 91 (8): e01824-16. doi: 10.1128/JVI.01824-16

11. Wang X., Maretti-Mira A.C., Wang L. et al. Liver-selective MMP- 9 inhibition in the rat eliminates ischemia-reperfusion injury and accelerates liver regeneration. Hepatology. 2019; 69: 314-328. doi: 10.1002/hep.30169

12. Ягода А.В., Корой П.В., Дудов Т.Р. Матриксные металлопротеиназы и морфологическая картина при хронических заболеваниях печени. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2023; 218 (10): 153-159. doi: 10.31146/1682-8658-ecg-218-10-153-159

13. Behairy O.G., El-Bakry M.M., Mansour A.I. et al. Matrix metalloproteinase-1 as a non-invasive biomarker to assess liver fibrosis in children with chronic liver disease. Egypt. Liver J. 2021; 11: 80. doi: 10.1186/s43066-021-00148-x

14. Lam S., Singh R., Dillman J.R. et al. Serum matrix metalloproteinase 7 is a diagnostic biomarker of biliary injury and fibrosis in pediatric autoimmune liver disease. Hepatology Communications. 2020; 4 (11): 1680-1693. doi: 10.1002/hep4.1589

15. Zhan J., Wang J., Zhang Z. et al. Noninvasive diagnosis of significant liver inflammation in patients with chronic hepatitis B in the indeterminate phase. Virulence. 2023; 14 (1). 2268497. doi: 10.1080/21505594.2023.2268497

16. Chen S., Huang H. Clinical non-invasive model to predict liver inflammation in chronic hepatitis B with alanine aminotransferase ≤ 2 upper limit of normal. Front. Med. 2021; 8: 661725. doi: 10.3389/fmed.2021.66172529

17. Jiang S., Wang J., Zhang Z. et al. Development and validation of a nomogram to predict significant liver inflammation in patients with chronic hepatitis B. Infect. Drug Resist. 2023; 16: 5065-5075. doi: 10.2147/IDR.S417007

18. Li X., Xing Y., Zhou D. et al. A non-invasive model for predicting liver inflammation in chronic hepatitis B patients with normal serum alanine aminotransferase levels. Front. Med. 2021; 8: 688091. doi: 10.3389/fmed.2021.688091

19. Xu W.S., Qiu X.M., Ou Q.S. et al. Red blood cell distribution width levels correlate with liver fibrosis and inflammation: a noninvasive serum marker panel to predict the severity of fibrosis and inflammation in patients with hepatitis B. Medicine. 2015; 94 (10): e612. doi: 10.1097/MD.0000000000000612

20. Wang H., Xu H., Qu L. et al. Red blood cell distribution width and globulin, noninvasive indicators of fibrosis and inflammation in chronic hepatitis patients. Eur. J. Gastroenterol. Hepatol. 2016; 28: 997-1002. doi: 10.1097/MEG.0000000000000662

21. Yao M., Wang L., Wang J. et al. Diagnostic value of serum Golgi protein 73 for liver inflammation in patients with autoimmune hepatitis and primary biliary cholangitis. Dis. Markers. 2022; 2022: 4253566. doi: 10.1155/2022/4253566

22. Yao K., Wang J., Wang L. et al. Association of anti-HBc and liver inflammation in HBeAg-negative chronic hepatitis B virus-infected patients with normal ALT and detectable HBV DNA. J. Med. Virol. 2022; 94 (2): 659-666. doi: 10.1002/jmv.27327

23. Liu J., Wang J., Yan X. et al. Presence of liver inflammation in Asian patients with chronic hepatitis B with normal ALT and detectable HBV DNA in absence of liver fibrosis. Hepatol. Commun. 2022; 6 (4): 855- 866. doi: 10.1002/hep4.1859

24. Mussbacher M., Brunnthaler L., Panhuber A. et al. Till death do us part — the multifaceted role of platelets in liver diseases. Int. J. Mol. Sci. 2021; 22: 3113. doi: 10.3390/ijms22063113

25. Negrin L.L., Carlin G.L., Ristl R. et al. Serum levels of matrix metalloproteinases 1, 2, and 7, and their tissue inhibitors 1, 2, 3, and 4 in polytraumatized patients: time trajectories, correlations, and their ability to predict mortality. PLoS One. 2024; 19 (3): e0300258. doi: 10.1371/journal.pone.0300258

26. Shan L., Wang F., Zhai D J. et al. Matrix metalloproteinases induce extracellular matrix degradation through various pathways to alleviate hepatic fibrosis. Biomed. Pharmacother. 2023; 161: 114472. doi: 10.1016/j.biopha.2023.114472

27. Latronico T., Mascia C., Pati I. et al. Liver fibrosis in HCV monoinfected and HIV/HCV coinfected patients: dysregulation of matrix metalloproteinases (MMPs) and their tissue inhibitors (TIMPs) and effect of HCV protease inhibitors. Int. J. Mol. Sci. 2016; 17: 455. doi: 10.3390/ijms17040455

28. Tsomidis I., Notas G., Xidakis C. et al. Enzymes of fibrosis in chronic liver disease. Biomedicines. 2022; 10 (12): 3179. doi: 10.3390/biomedicines10123179

29. Ando W., Yokomori H., Tsutsui N. et al. Serum matrix metalloproteinase-1 level represents disease activity as opposed to fibrosis in patients with histologically proven nonalcoholic steatohepatitis. Clin. Mol. Hepatol. 2018; 24 (1): 61-76. doi: 10.3350/cmh.2017.0030

30. Martinez-Castillo M., Hernandez-Barragan A., Flores-Vasconcelos I. et al. Production and activity of matrix metalloproteinases during liver fibrosis progression of chronic hepatitis C patients. World J. Hepatol. 2021; 13 (2): 218-232. doi: 10.4254/wjh.v13.i2.218

31. Zdanowicz K., Kowalczuk-Kryston M., Olanski W. et al. Increase in serum MMP-9 and TIMP-1 concentrations during alcohol intoxication in adolescents — a preliminary study. Biomolecules. 2022; 12: 710. doi: 10.3390/biom12050710

32. Li Y., Liu H., Xu L. Expression of MMP-9 in different degrees of chronic hepatitis B and its correlation with inflammation. Exp. Ther. Med. 2018; 16: 4136-4140. doi: 10.3892/etm.2018.6673

33. Yu D., Li Y., Xu Y. et al. Dysregulated matrix metalloproteinases and tissue inhibitors of metalloproteinase in residual splenic tissue after subtotal splenectomy due to portal hypertension. Int. J. Clin. Exp. Pathol. 2017; 10 (2): 1273-1282.

34. Sufleţel R.T., Melincovici C.S., Gheban B.A. et al. Hepatic stellate cells — from past till present: morphology, human markers, human cell lines, behavior in normal and liver pathology. Rom. J. Morphol. Embryol. 2020; 61 (3): 615-642. doi: 10.47162/RJME.61.3.01

35. Andrade T.G., Xavier L.C. D., Souza F.F. et al. Risk predictors of advanced hepatic fibrosis in patients with nonalcoholic fatty liver disease — a survey in a university hospital in Brazil. Arch. Endocrinol. Metab. 2022; 66 (6): 823-830. doi: 10.20945/2359-3997000000514

36. Кравченко Ю.А., Корой П.В. «Воспалительный индекс» и гистологическая картина при неалкогольной жировой болезни печени. Медицинский вестник Северного Кавказа. 2023; 18 (4): 409-411. doi: 10.14300/mnnc.2023.18097

37. Ягода А.В., Корой П.В., Сляднев С.А. Положительная корреляция уровня молекул суперсемейства иммуноглобулинов ICAM-1, VCAM-1, PECAM-1 с показателями индекса фиброза при неалкогольной жировой болезни печени. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2017; 138 (2): 45-51.


Рецензия

Для цитирования:


Ягода А.В., Корой П.В., Дудов Т.Р. Неинвазивные предикторы выраженной гистологической активности при хронических заболеваниях печени: роль матриксных металлопротеиназ. Архивъ внутренней медицины. 2025;15(3):216-225. https://doi.org/10.20514/2226-6704-2025-15-3-216-225. EDN: QKHGQS

For citation:


Yagoda A.V., Koroy P.V., Dudov T.R. A Noninvasive Predictors of Significant Histological Activity in Chronic Liver Diseases: The Role of Matrix Metalloproteinases. The Russian Archives of Internal Medicine. 2025;15(3):216-225. https://doi.org/10.20514/2226-6704-2025-15-3-216-225. EDN: QKHGQS

Просмотров: 82


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2226-6704 (Print)
ISSN 2411-6564 (Online)